Terapi gen secara historis telah didefinisikan sebagai penambahan gen baru
untuk sel manusia. Namun, munculnya teknologi gen
editing telah menimbulkan paradigma baru di mana urutan genom manusia
dapat dimanipulasi untuk mencapai efek terapeutik. Termasuk penyembuhan penyakit yang disebabkan mutasi, pengobatan dengan terapi gen, dan penghapusan
gen atau urutan genom yang rusak.
Konsep terapi gen adalah menggantikan urutan DNA yang meyebabkan
kecacatan dengan urutan DNA yang benar. Tantangan dari teknoloi gen editing adalah
keterbatasan untuk secara tepat mengontrol penyisipan materi genetik ke dalam
sel, menjaga stabilitas gen saat pembelahan sel dan kemungkinan efek yang
ditimbulkan masih tidak terduga. Selain itu gen yang terlalu besar tidak mudah
untuk ditransfer oleh vekor yang tersedia. Namun demikian, kemajuan teknik
penambahan gen eksogen telah banyak mengalami kemajuan dan menunjukkan hasil
klinis yang menjanjikan sebagai salah satu teknik pengobatan.
MEKANISME GEN
EDITING
Dasar untuk bidang gen editing adalah penemuan bahwa
kerusakan DNA
untai ganda (Double
Strand Breaks/DSB) dapat digunakan untuk
merangsang perbaikan sel secara endogen.
DNA biasanya diperbaiki melalui salah satu dari dua pathways utama
perbaikan homolog (HDR)
atau penggabungan akhir (NHEJ). Maria Jasin menunjukkan bahwa efisiensi perbaikan
gen melalui rekombinasi homolog dalam sel mamalia
bisa dirangsang lebih cepat oleh situs target DSB. NHEJ berfungsi untuk perbaikan tanpa template melalui religasi langsung dari bagian ujung. Jalur perbaikan ini rawan kesalahan dan sering
menyebabkan penyisipan atau penghapusan (indels) di lokasi
istirahat.
Gen Knockout/Mutasi
Bentuk paling sederhana dari gen editing memanfaatkan sifat rawan
terjadinya kesalahan
dari NHEJ untuk mengenali indels kecil di situs target. NHEJ
klasik langsung mengikat DNA diproses akhir sedangkan
alternatif NHEJ (Juga dikenal sebagai end microhomology-mediated
and joining atau MMEJ).
Aktif selama semua tahap siklus sel, kedua jalur NHEJ ini
memperbaiki DNA dengan mutagenesis, menghasilkan pembentukan indels di lokasi istirahat.
Ketika situs target nuklease ditempatkan di daerah
pengkode gen, indels yang dihasilkan sering menyebabkan frameshifts. Pada penyakit seperti Duchenne Muscular Dhystrophy (DMD), delesi mengakibatkan frameshifts dan kehilangan fungsi
protein yang seharusnya dihasilkan, NHEJ diinduksi untuk digunakan untuk mengembalikan reading frame yang benar dari gen.
Penerapan yang paling umum
mutagenesis adalah gen knockout
(KO). Berbeda dengan tradisi
terapi gen, yang terbatas pada penambahan eksogen
urut ke dalam genom, penggunaan KO untuk menambahkan gen secara endogen merupakan
peluang baru pengobatan terapi
gen. Salah satu aplikasinya adalah untuk pengobatan penyakit Huntington. Penyakit ini disebabkan oleh
pengulangan alel dari Gen huntingtin (HTT)
yang menghasilkan protein HTT mutan
yang beracun. Menghilangkan alel mutan dengan editing gen berbasis NHEJ bisa memberikan
manfaat klinis untuk pasien Huntington.
Metode
ini juga diterapkan untuk pengobatan HIV.
Delesi
Gen
Daripada langsung menargetkan pada genom manusia, KO gen dilakukan dengan
bantuan virus. Metode NHEJ memungkinkan untuk menghapus segmen besar dari DNA. Pendekatan ini berguna
untuk strategi terapi yang mungkin memerlukan penghapusan
seluruh unsur genomik, seperti daerah penambah, sebagaimana untuk pengobatan
hemoglobinopathies dengan penghapusan BCL11A eritroid.
Koreksi
Gen
Koreksi gen NHEJ, dapat menginduksi editing gen yang tepat dengan
merangsang HDR dengan template donor eksogen yang disediakan. Aktif selama fase S dan G2, HDR secara alami menggunakan
kromatit sebagai template untuk perbaikan DNA.
Urutan gen eksogen juga dapat digunakan sebagai
template untuk proses perbaikan. Perbedaan urutan dalam template donor dapat
dimasukkan ke dalam lokus endogen untuk menyembuhkan
penyakit yang
disebabkan mutasi.
Vektor virus seperti lentivirus atau Virus Adeno
Associated (AAV) juga dapat digunakan sebagai sumber DNA donor.
Insersi
Gen
Meskipun terapi gen tradisional telah berhasil menggunakan
vektor virus
untuk memasukkan gen eksogen ke dalam genom, ketidakmampuan
untuk mengontrol situs integrasi virus ini menimbulkan mutagenesis
insersional. Penggunaan template donor, di mana penyisipan genetik yang diinginkan menggunakan urutan homolog identik dengan nuclease, memungkinkan lokasi
spesifik penyisipan DNA melalui DSB diinduksi HDR. Target penyisipan gen terapi
ke situs yang telah ditentukan dalam genom, mengurangi risiko insersional mutagenesis dan memungkinkan keberhasilan ekspresi gen
lebih tinggi.
Mekanisme alternatif untuk transgen adalah dengan
menggunakan DSBs nuklease untuk membuat DNA kompatibel antara DNA donor dan situs endogen.
Zinc
Finger Nucleases (ZFN)
Zinc finger (ZF) adalah protein faktor transkripsi yang
jumlahnya melimpah dan Cys2
His2
domain zinc finger adalah salah satu
yang paling umum ditemukan dalam genom manusia.
Struktur kristal Zif268 sebagai dasar
untuk memahami DNA ZFN. Dalam Kehadiran atom seng, domain zinc finger
membentuk ββα struktur dengan α-helic masing-masing jari membuat kontak dengan 3 atau 4
bp dalam alur utama DNA.
Peneliti telah berhasil
membuat rancangan ZFS bekerja dengan baik. Namun masih banyak yang harus
dikembangkan, misalnya menggunakan OPEN untuk menyeleksi protein. Teknologi ZFN memungknkan domain DNA
dan cleavage domain dari FokI restriksi endonuklease bebas satu sama lain.
Dengan mengganti FokI DNA
binding domain dengan domain zinc finger, dapat
menghasilkan chimeric
nucleases dengan pengikatan khusus. Awal percobaan menunjukkan bahwa DSBs diinduksi ZFN
dapat digunakan untuk
memodifikasi genom baik melalui NHEJ atau HDR
.Teknologi l\telah berkembang digunakan untuk memodifikasi gen somatik manusia
TALENs
Penemuan TALE dari gen Xanthomonas
sangat
menarik untuk mendesain DNA binding protein. Asam amino TALE 33-35 mengulang setiap mengikat pasangan
basa tunggal DNA dengan spesifisitas ditentukan oleh dua residu hypervariable.
Struktur kristal DNA
mengungkapkan bahwa setiap pengulangan membentuk struktur helix dihubungkan oleh sebuah loop
yang menyajikan
residu hypervariable ke dalam alur utama sebagai
protein pembungkus di sekitar DNA dalam struktur superheliks.
Juga mirip dengan ZFNs,
Talens telah terbukti secara efisien menginduksi baik NHEJ
dan HDR
di somatik manusia.
Meganucleases
Teknologi meganuclease melibatkan spesifisitas pengikatan DNA endonucleases.
Kelas terbesar dari endonuklease adalah keluarga LAGLIDADG, yang meliputi I-CreI
Saya dan I-SceI. Melalui
kombinasi
desain dan seleksi, endonuclease dapat direkayasa untuk menciptakan urutan baru. Banyak
penelitian yang menunjukkan bahwa meganuklease dapat digunakan untuk mengedit
genom DNA.
CRISPR / nucleases
CRISPR-Cas berasal dari sistem kekebalan tubuh yang berkembang pada bakteri
untuk melawan invasi plasmid dan virus. Tiga komponen diperlukan untuk sistem CRISPR nuklease adalah Cas9
protein, crRNA dan tracrRN. Sistem ini dapat dikurangi menjadi dua
komponen fusi dari crRNA dan tracrRNA menjadi panduan tunggal
RNA (gRNA). Pembentukan heterodupleks DNA-RNA di
situs target memungkinkan untuk pembelahan DNA target
dengan Cas9-RNA
kompleks. Berbeda dengan tiga sistem nuklease, CRISPR/Cas nucleases tidak memerlukan
rekayasa protein baru untuk setiap situs target DNA. Lebih mudah
dilakukan hanya dengan
mengubah daerah
pendek dari gRNA yang menentukan spesifisitas. Selain itu, karena protein Cas9
tidak secara langsung digabungkan ke gRNA, sistem dapat
digunakan bersamaan dengan
gRNAs untuk menginduksi DSBs di beberapa lokus.
APLIKASI GENE
TERAPI
Kemampuan untuk memanipulasi setiap urutan genom dengan mengedit gen
telah menciptakan beragam kesempatan untuk mengobati banyak penyakit berbeda
Antivirus
Aplikasi yang paling sederhana dari editing gen adalah dengan menggunakan
mekanisme NHEJ untuk Knockout (KO) gen dalam terapi sel secara ex vivo, di mana sel-sel somatik dapat diisolasi, dimodifikasi, dan transfer kembali ke pasien. Mekanisme yang paling canggih
adalah modifikasi sel T secara ex vivo untuk melumpuhkan CCR5 coreceptor digunakan untuk HIV.
Studi awal ini menunjukkan
penurunan viral load dan peningkatan jumlah CD4+ T-sel pada tikus yang
terinfeksi HIV di mana
gen CCR5 telah digantikan oleh nucleases zinc finger.
Hasil yang sama pada editing gen dan transplantasi
CD34+ HSCS ke tikus yang telah di iradiasi, memungkinkan untuk melindungi keturunan dari infeksi HIV CCR5-tropik.
Telah
dilakukan serangkaian uji
klinis uji
positif HIV
pada pasien manusia. Sejauh
ini hasil penelitian menunjukkan metode gen editing dapat dilakukan bagi pasien
manusia.
Data dari penelitian ini menunjukkan efikasi klinis yang lebih besar pada
pasien yang
heterozigot. Pengendalian virus HIV
dilakukan dengan pengembangan strategi menggunakan gen editing mirip dengan KO CCR5 dengan Talens, CRISPR/Cas9 dan meganucleases. Penelitian lain telah berkembang dengan menargetkan CCR5 untuk meningkatkan daya tahan terhadap infeksi HIV. Termasuk sasaran dari
coreseptor CXCR4 232 atau PSIP1 yang
mengkode LEDGF/protein p75 yang dibutuhkan untuk
integrasi HIV. Selain virus HIV juga telah diterapkan untuk berbagai virus lainnya termasuk
virus hepatitis B, virus herpes, dan virus papiloma manusia.
Strategi ini biasanya melibatkan menghapus genom virus dengan degradasi berikut.
Cancer Immunotherapy
Cancer immunotherapy telah diakui sebagai salah satu
kemajuan terbesar dalam penelitian biomedis dalam
beberapa tahun terakhir. Secara khusus, mengadopsi imunoterapi T-sel, di mana sel
T direkayasa untuk menyerang antigen kanker
secara
ex vivo dan ditransfer kembali ke pasien, telah mampu
mengobati beberapa kasus limfoma, leukemia, dan melanoma.
Meskipun keberhasilan dan uji klinis yang menjanjikan
sedang berlangsung, ada beberapa daerah di mana imunoterapi T-sel bisa ditingkatkan
dengan gen editing. Strategi untuk imunoterapi melibatkan rekayasa sel T untuk
mengekspresikan reseptor sintetis yang dikenal sebagai
reseptor antigen chimeric atau CAR pada sel kanker.
Tantangan utama untuk pengembangan immunoterapi sel T
dapat adalah kebutuhan untuk menggunakan sel autologous
untuk menghindari penolakan kekebalan tubuh. Untuk
mengatasi hal ini, gen editing menggunakan untuk KO pada antigen leukosit manusia (HLA) oleh
sistem kekebalan tubuh.
Pendekatan ini mungkin berguna untuk allogeneic
terapi sel luar imunoterapi T-sel. Sebagai contoh, pendekatan
yang
telah diterapkan dalam sel pluripoten manusia memiliki
kegunaan yang beragam dalam pengobatan regeneratif
serta di sel endotel yang dapat digunakan untuk cangkok pembuluh
darah alogenik. Hambatan utama untuk imunoterapi sel T adalah penghambatan fungsi efektor sel T oleh ekspresi
inhibitor pos pemeriksaan di permukaan sel-sel tumor.
Sebagai contoh, pengikatan inhibitor PD-1 reseptor pada sel T untuk
memblokir fungsi efektor sel T dan menginduksi apoptosis. PD-1 reseptor terhambat sehingga sel-sel kanker berhasil menghindari sistem
kekebalan tubuh. Sebagai strategi untuk mengatasi hal ini, editing gen telah digunakan
untuk KO
PD-1 dalam sel T, mengarah ke peningkatan fungsi efektor sel T.
PD-1 dalam sel T, mengarah ke peningkatan fungsi efektor sel T.
Gangguan Hematologi
Uji klinis terapi gen pertama Therapiutik Adenosin Deaminase (ADA) transgen sel-sel T untuk mengobati anak-anak dengan immunodefisiensi (ADA-SCID)
dan kemudian pengobatan SCID X-linked
(X-SCID) oleh pengiriman gen retroviral untuk CD34+
hematopoietik sel induk (HSCS). Fokus awal terapi gen ex vivo untuk immunodeficiency didasarkan pada kebutuhan untuk
mengembangkan pengobatan serta memanfaatkan metode untuk pengiriman gen retroviral. Contoh pertama dari koreksi gen endogen dalam sel manusia
difokuskan pada reseptor IL2 rantai gamma yang bermutasi
di X-SCID. Koreksi di CD34 + HSCS sebagai alat gen editing juga telah dikembangkan untuk memperbaiki mutasi gen yang terkait
dengan ADA-SCID dan SCID radiosensitive, disebabkan oleh gangguan DNA-dependent
kinase protein (DNA-PK).
Pembentukan editing gen di CD34+ HSCS
dan sel pluripotent manusia telah memberikan pilihan baru
untuk mengobati gangguan hematologi, termasuk penyakit sel sabit, yang disebabkan
oleh mutasi titik E6V tertentu di
β-globin, dan β thalassemia,
yang disebabkan oleh jenis mutasi ke β-globin. Mutasi globin diperbaiki dengan mengedit gen kedua
di iPSCs manusia. Gen
editing untuk terapi sel eritroid dan inaktivasi enhancer dengan
mengedit gen menyebabkan penekanan BCL11A dan peningkatan regulasi
γ-globin hanya dalam sel erythroid.
Pendekatan ini dapat digunakan sebagai
mekanisme terapi untuk penyakit sel sabit
dan thalassemia.
Editing Gen Hati
Target koreksi gen dalam hati memiliki potensi untuk
mengobati berbagai penyakit, termasuk gangguan pembekuan hemofilia
A dan hemofilia B, termasuk penyakit Fabry, penyakit Gaucher, Pompe, von
Gierke, Hurler dan Hunter sindrom. Namun, masing-masing populasi pasien relatif kecil dan
jenis mutasi untuk setiap gen yang terlibat dalam penyakit
ini berbeda.
Permasalahan
yang masih muncul apakah koreksi
gen dapat dicapai untuk mencapai keberhasilan terapi
jika didorong oleh promotor endogen alami yang sesuai
untuk setiap
gen. Pendekatan untuk mengatasi masalah ini adalah integrasi gen terapeutik ke albumin
lokus hilir promotor albumin endogen.
Pendekatan ini telah efektif digunakan
pada tikus berbasis AAV donor homolog template untuk mengobati hemofilia tanpa nucleases
71 dan dengan ZFNs yang mungkin untuk meningkatkan penargetan efisiensi.
Munculnya CRISPR sistem/Cas9 memungkinkan teknoologi
gen editing untuk menyembuhkan berbagai macam penyakit. Editing gen dengan CRISPR/Cas9 menggunakan tikus dengan injeksi melalui vena plasmid DNA ke tikus. Meskipun secara keseluruhan efisiensi gen
editing yang relatif rendah (0,4%), model ini memungkinkan untuk
pemilihan koreksi sel.
PCSK9 mengkode proteinase. Penurunan tingkat LDLR menyebabkan
metabolisme yang lebih rendah pada
kolesterol LDL (LDL-C), peningkatan LDL-C, dan
peningkatan risiko penyakit kardiovaskular. Penemuan
variasi genetik alami yang mengarah ke
aktivitas tinggi atau
rendah dan kadar kolesterol yang sesuai telah menyebabkan ketertarikan pada PCSK9 blocking untuk menurunkan kolesterol.
Dua studi yang berbeda
telah menunjukkan bahwa pengobatan tunggal dari Cas9 dan
PCSK9 bertarget gRNA diberikan
ke hati dapat kadar kolesterol.
Selain editing gen dalam hati, juga
digunakan untuk
diferensiasi sel-sel pluripotent manusia menjadi fungsi
hepatosit untuk sebagai
alternatif koreksi sel. Sebagai
contoh, α-1-Antitrypsin dikoreksi oleh editing gen di iPSCs manusia
dan kemudian dibedakan menjadi sel-sel hati yang menunjukkan
pemulihan gen.
Meskipun jenis produk berbasis sel mungkin
secara signifikan lebih kompleks daripada obat berbasis
virus, penelitian ini memungkinkan untuk analisi genom yang komprehensif.
Gangguan Neurotransmitter
Kemajuan dalam pengiriman gen dan transplantasi sel ke pusat
sistem saraf, otot rangka dan jantung memungkinkan terapi sel digunakan pada banyak gangguan neuromuscular, termasuk DMD,
atrofi otot, ataksia,
Huntington, dan amyotrophic lateral
sclerosis (ALS). DMD disebabkan oleh mutasi pada gen distrofin, yang paling sering adalah delesi yang menggeser fragmen gen keluar dari frame dan
membuat produk protein nonfungsional. Karena coding
urutan gen distrofin sangat besar (14
kb), tidak dapat dikemas menjadi vektor pengiriman virus.
Meskipun pemotongan mini gene telah dikembangkan untuk menjadi vektor virus, hanya sebagian
yang fungsional
dibandingkan dengan itu gen yang utuh dan kemampuan mereka untuk membalikkan penyakit manusia
masih harus diteliti lagi. Teknologi genom editing dalam sel kultur dari pasien DMD menunjukkan
disfungsi trophin atau restorasi ekspresi protein distrofin.
Untuk mengembangkan menjadi suatu pendekatan yang berpotensi diterapkan
secara klinis untuk pasien DMD, penelitian terbaru telah memasukkan
yang CRISPR sistem/Cas9 ke vektor AAV dengan tropisme
untuk otot jantung. Telah diuji pada tikus dengan diiterapkan secara lokal melalui intramuscular atau
sistemik melalui injeksi intravena untuk DMD,
editing gen oleh CRISPR / Cas9. Satu studi menunjukkan editing gen Pax7-positif sel
progenitor otot yang dapat bertindak sebagai sumber terbarukan sel di mana gen distrofin telah
diperbaiki. Pendekatan translasi ini dilakukan editing gen di otot rangka dengan adenoviral
dan koreksi mutasi distrofin di single-cell
embrio tikus untuk
membalikkan gejala penyakit.
Gangguan Kulit
Pengembangan cangkok kulit dari autologus dan
sel alogenik, termasuk sel-sel iPS,
menciptakan kemungkinan baru untuk mengobati penyakit genetik yang mempengaruhi
kulit. Sebagai contoh, resesif distrofik epidermolisis bulosa adalah penyakit
yang disebabkan oleh mutasi pada gen pengkodean jenis kolagen VII. Kemungkinan
dapat diobati dengan memperbaiki
sel-sel pasien dengan genom editing dan menggunakan sel-sel untuk cangkok kulit.
Dalam satu penelitian, mutasi pada gen kolagen tipe VII
yang dikoreksi
dalam fibroblas pasien kemudian diprogram
untuk sel iPS yang dapat digunakan untuk membentuk struktur kulit
secara in vivo.
Studi lain juga mengoreksi mutasi penyebab penyakit
dalam sel iPS pasien, dan menggunakan sel-sel ini untuk menghasilkan epitel
keratinosit.
Gangguan Mata
Telah dilakukan uji klinis untuk pengobatan Leber
Congenital Amaurosis tipe 2 (LCA2) dan telah mendorong penelitian retina
menggunakan bidang terapi gen.
Menggunakan
injeksi subretinal dari AAV encoding
gen RPE65. LCA adalah penyebab utama dari kebutaan
dan disebabkan oleh mutasi pada setidaknya 18 gen berbeda.
LCA10, bentuk paling umum dari LCA, disebabkan
oleh mutasi pada sekitar 7,5 KB
CEP290 gen dan karena itu pendekatan dengan terapi gen standar digunakan untuk LCA2 tidak disetujui karena ukuran
besar. S. Aureus Cas9 digunakan untuk menghapus sebuah daerah intronic di
CEP290 gen yang mengandung mutasi dan menciptakan situs yang mengganggu
urutan gen coding. Penghapusan daerah intronic ini dipulihkan
ekspresi CEP290 yang tepat.
Gangguan Pernafasan
Cystic fibrosis disebabkan oleh mutasi CFTR channel. Hilangnya fungsi ini menyebabkan
disfungsi transportasi cairan
epitel di beberapa organ. Khususnya, hilangnya cairan transportasi cairan
lender dalam paru-paru dan
terjadinya infeksi
sehingga menyebabkan infeksi saluran napas. Editing gen telah digunakan untuk memperbaiki mutasi CFTR di
sel induk usus pasien dan sel-sel iPS yang bisa
dibedakan menjadi sel-sel epitel.
Tantangan bagi terapi gen dan gen
editing untuk cystic fibrosis adalah pengiriman gen yang efisien untuk epitel paru-paru.
Antimikroba
Disamping mengubah
genom manusia penelitian mengenai gen editing juga dikembangkan untuk menyerang
bakteri pathogen. Studi terbaru
menunjukkan bukti pendekatan menggunakan CRISPR/Cas9 untuk menghilangkan bakteri dalam
tikus dan infeksi larva ngengat,
serta selektif menghilangkan plasmid dan populasi bakteri.
Strategi alternatif ini untuk mengubah sistem CRISPR dengan pengiriman crRNAs,
seperti yang baru-baru ini dilakukan untuk
menghapus selektif strain bakteri dengan sistem CRISPR
tipe I. Pilihan sistem tipe I adalah penting mengingat bahwa enzim CAS3
tipe I sistem memiliki aktivitas exonuclease yang dapat
memfasilitasi DNA. tipe II CRISPR/Cas9 hanya memotong DNA.
KESIMPULAN DAN
ARAH MASA
DEPAN
Kemajuan luar biasa telah dibuat dalam mengatasi tantangan
terapi gen konvensional dengan mengembangkan teknologi
baru untuk dari genom manusia. Hal ini telah membantu
mengatasi beberapa kendala yang telah melanda bidang gen
terapi selama beberapa dekade. Hal
yang masih menjadi kendala adalah mengenai
keselamatan dan pengiriman. Dalam hal ini, kemajuan pesat
sedang dibuat baik untuk meningkatkan spesifisitas alat genom
editing dan meningkatkan sensitivitas untuk menilai kekhususan genome
yang luas.
Banyak keberhasilan praklinis yang Studi terakhir di sini, serta perkembangan genom
editing dalam uji klinis, merupakan sumber optimisme yang
signifikan untuk masa depan bidang ini. Kemajuan pesat di lapangan kemungkinan akan terus berlanjut
menghasilkan teknologi baru yang
akan memperluas lingkup genom editing. Alternatif gen
editing, tidak bergantung
pada DSB, sistem CRISPR adalah alternatif. Kesimpulan,
editing genom telah mengubah definisi gen dan terapi sel
dan telah menjadi faktor kunci dalam bidang ini, tetapi
membutuhkan
banyak penelitian untuk dapat diterapkan pada manusia.